p0017s快速银染试剂盒

碧云天快速银染试剂盒SDS-PAGE蛋白染色p0017s(Fast Silver Stain Kit)是一种快速简单、可用于SDS-PAGE或非变性PAGE等蛋白银染的试剂盒。本试剂盒也可以用于2D凝胶的银染，并且染色后和后续的质谱检测兼容。

图1. 本试剂盒PAGE胶银染效果图。BSA(左图)和Hela细胞裂解液(右图)在SDS-PAGE后使用本试剂盒进行银染的效果图。左侧泳道均为蛋白分子量标准。左图为获得较高的检测灵敏度，显色时间较长，已经产生了橙黄色的背景；右图显色时间较短，仅出现浅土黄色的背景。

本试剂盒可足够用于25块常规的8×10cm凝胶的银染。
包装清单：

保存条件：

室温保存，一年有效。银溶液(100X)和银染显色加速液(2000X)需避光保存。
注意事项：
  由于银染灵敏，操作时请注意尽量使用高纯度的水，并确保所使用的器皿非常清洁，使用洁净的玻璃器皿。操作时必须戴手套，避免皮肤和凝胶直接接触。
  下述使用说明中各种溶液的使用量适用于大小为8×10cm厚度为0.75-1mm的凝胶。对于更大的凝胶，各种溶液的使用量需按凝胶面积的比例放大，对于更厚的凝胶，作用时间需按照厚度的比例适当延长。
  本说明书所指的室温为20-25℃，操作温度较低时由于溶液的扩散能力下降，各步骤需适当延长时间。
银染基本显色液(5X)在低温环境下可能会出现少量沉淀，可在30-50℃水浴中溶解，并充分混匀后使用。至少后续稀释至1X后须确保完全溶解。

使用说明：
1. 固定：
电泳结束后，取凝胶放入约100ml固定液中，在摇床上室温摇动20分钟，摇动速度为60-70rpm。固定 40分钟以上甚至过夜可以进一步降低背景。
固定液的配制：依次加入50ml乙醇、10ml乙酸和40ml Milli-Q级纯水或双蒸水，混匀后即成100ml固 定液。
2. 30%乙醇洗涤：
弃固定液，加入100ml 30%乙醇，在摇床上室温摇动10分钟，摇动速度为60-70rpm。
30%乙醇的配制：70ml Milli-Q级纯水或双蒸水中加入30ml乙醇，混匀后即成100ml 30%乙醇。
3. 水洗涤：
弃30%乙醇，加入200ml Milli-Q级纯水或双蒸水，在摇床上室温摇动10分钟，摇动速度为60-70rpm。如果本步骤用水洗涤更长时间，对降低染色的背景略有帮助。
4. 增敏：
弃水，加入100ml银染增敏液(1X)，在摇床上室温摇动2分钟，摇动速度为60-70rpm。
银染增敏液(1X)的配制：99ml Milli-Q级纯水或双蒸水中加入1ml银染增敏液(100X)，混匀后即为银 染增敏液(1X)。银染增敏液(1X)配制后需在2小时内使用。
5. 水洗涤(共2次)：
弃原有溶液，加入200ml Milli-Q级纯水或双蒸水，在摇床上室温摇动1分钟，摇动速度为60-70rpm。
弃水，再加入200ml Milli-Q级纯水或双蒸水，在摇床上室温摇动1分钟，摇动速度为60-70rpm。
6. 银染：
弃水，加入100ml银溶液(1X)，在摇床上室温摇动10分钟，摇动速度为60-70rpm。
银溶液(1X)的配制：99ml Milli-Q级纯水或双蒸水中加入1ml银溶液(100X)，混匀后即为银溶液 (1X)。银溶液(1X)配制后需在2小时内使用。
7. 水洗涤：
弃原有溶液，加入100ml Milli-Q级纯水或双蒸水，在摇床上室温摇动1-1.5分钟，摇动速度为 60-70rpm。
注意：水洗涤的时间不能超过1.5分钟。
8. 显色：
弃水，加入100ml银染显色液，在摇床上室温摇动3-10分钟，直至出现比较理想的预期蛋白条带，摇 动速度为60-70rpm。
银染显色液的配制：80ml Milli-Q级纯水或双蒸水中加入20ml银染基本显色液(5X),再加入0.05ml银 染显色加速液(2000X)，混匀后即为银染显色液。银染显色液配制后需在20分钟内使用。
9. 终止：
弃银染显色液，加入100ml银染终止液(1X)，在摇床上室温摇动10分钟，摇动速度为60-70rpm。终止 时有气体产生属正常现象，产生的气体为二氧化碳。
银染终止液(1X)的配制：95ml Milli-Q级纯水或双蒸水中加入5ml银染终止液(20X),混匀后即为银染 终止液(1X)。银染终止液(1X)配制后宜当天使用。
10. 水洗涤：
弃银染终止液，加入100ml Milli-Q级纯水或双蒸水，在摇床上室温摇动2-5分钟，摇动速度为 60-70rpm。
11. 保存：
可在Milli-Q级纯水或双蒸水中保存。或采用适当的方式制备成干胶。

常见问题：
1. 背景太深：
a. 显色时间过长。通常显色反应会在10分钟内结束，显色反应时间过长会导致背景很深。
b. 洗涤不充分。洗涤时间过短，或洗涤液加入的量不足，或者容器过于狭小导致摇动时溶液不易充分混合，或摇动速度过慢，导致混匀不充分。请按照说明书的建议确保各种溶液的用量和作用时 间，摇床的推荐速度为60-70rpm。
c. 凝胶中原有的缓冲液等未在固定步骤中去除干净。一方面需确保固定的时间和固定液的用量，另 一方面对于不是常用的Bis-Tris缓冲的凝胶需要更长的固定时间以充分去除凝胶中的原有缓冲成分，以降低背景。
d. 水的纯度太低。需使用大于16 MΩ. cm的高*纯度水。
2. 蛋白条带浅：
a. 蛋白的半胱氨酸(Cysteine)残基的含量低或几乎没有。半胱氨酸残基的存在对于银染很重要，半胱氨酸残基的含量过低会导致检测灵敏度下降。
b. 银染后水洗涤时间过长。在银溶液染色时需严格控制水洗涤的时间，水洗涤的时间不能超过1.5分 钟，否则会导致过多的银离子被洗去，导致检测灵敏度下降。
c. 上样量不足。本试剂盒检测BSA的灵敏度可以达到0.3ng，对于不同的蛋白检测灵敏度可能不同。 对于一些蛋白可能需要大于1ng的蛋白量才能被检测到。
d. 固定步骤后的洗涤不够充分。确保洗涤和水洗涤的用 量和时间，可以适当延长洗涤时间。
3. 凝胶上出现小点或或其它非蛋白的痕迹：
a. 凝胶没有充分被溶液浸没。请注意选择大小合适的容器，并加入足量的各种溶液，同时需保持适 当的混匀速度确保凝胶可以被溶液浸没。
b. 用于银染的容器没有充分洗涤干净。容器需先用洗涤剂充分洗涤，随后用自来水充分冲洗，再用高纯度水再洗涤数次。该容器能用于银染，并注意避免各种可能的蛋白污染。为确保充 分洗涤干净，对于耐化学腐蚀的容器，例如玻璃容器。
c. 指纹或其它压痕。请注意戴手套操作，切勿直接接触皮肤。操作时请注意尽量勿挤压、折叠或摩 擦凝胶。
d. 有金属物质接触凝胶。金属物质例如金属镊子等接触凝胶会出现非特异性痕迹。
4. 在60-70 kD处出现一片模糊的蛋白染色背景：
皮肤上脱落的角蛋白(keratin)污染了蛋白样品。一方面需注意戴手套操作，另一方面需注意盛放蛋 白样品的容器盖子尽量不要敞开，甚至在取放蛋白样品时在超净台内进行以避免可能的角蛋白污染。
5. 在凝胶的顶端处出现黄色背景：
a. 样品中DTT浓度高。采用其它适当的还原试剂，或者在许可范围内适当减少DTT的用量。
b. 采用Tris-Glycine-SDS电泳体系。Tris-Glycine-SDS电泳体系中的Glycine会导致背景凝胶的顶端 出现轻微的黄色背景。换用Tris-Tricine-SDS电泳体系则可显著消除此黄色背景。
6. 银在染色器皿中出现沉淀：
染色器皿中可能含有残余的洗涤剂或上次银染时的残余试剂。需确保把染色器皿洗涤干净。

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